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InstitutNationaldesSciencesAppliquéesdeToulouse(INSAToulouse)
MicrobiologieetBiocatalyseIndustrielles
RungtiwaPiamtongkam
jeudi22avril2010
4ITRE
Expressionandevolutionoflipasesfrom
CandidarugosaandYarrowialipolyticatomodify
theiractivitiesandspecificities
*529
PreedaBoon-Long ChulalongkornUniversité/Président
SiriratRengpipat/Rapporteur
SuphangChulalaksananukul MahidolUniversité/Examinateur
Orathai Chavalparit Chulalongkorn/
%COLEDOCTORALE
SciencesEcologiques,Vétérinaires,AgronomiquesetBioingénieries(SEVAB)
5NITÏDERECHERCHE
Laboratoired'IngénieriedesSystèmesBiologiquesetdesProcédés
RECTEURSDE4HÒSE
AlainMartyetWarawutChulalaksananukul
ThierryChardot
EricDubreucqPROJET DE THESE
présenté devant
Chulalongkorn Université de Thaïlande
en vue de l'obtention du
DOCTORAT DE L’UNIVERSITE DE TOULOUSE
Spécialité : Sciences Ecologiques, Vétérinaires, Agronomiques et Bioingénieries
Filière : Microbiologie et Biocatalyse Industrielles
par
Rungtiwa Piamtongkam
EXPRESSION AND EVOLUTION OF LIPASES FROM
CANDIDA RUGOSA AND YARROWIA LIPOLYTICA TO IMPROVE
THEIR ACTIVITIES AND SPECIFICITIES
Ecole doctorale : Sciences Ecologiques, Vétérinaires, Agronomiques et Bioingénieries (SEVAB)
Unité de recherche : Laboratoire d'Ingénierie des Systèmes Biologiques et des Procédés (UMR CNRS
5504, UMR INRA 792) de l'INSA de Toulouse
2NOM : PIAMTONGKAM Prénom : Rungtiwa
Titre : Expression et évolution des lipases de Candida rugosa et Yarrowia lipolytica pour modifier leurs
activités et spécificités.
Spécialité: Sciences Ecologiques, Vétérinaires, Agronomiques et Bioingénieries
Filière : Microbiologie et Biocatalyse industrielle
Directeurs de thèse: Alain Marty et Warawut Chulalaksananukul
Année : 2010 Lieu : Chulalongkorn Université, Thaïlande N° ordre : 1030 Pages : 199
RESUME :
Les lipases, protéines ubiquitaires, sont les enzymes les plus étudiées et les plus utilisées dans l’industrie. Elles
catalysent un très grand nombre de réactions, d’hydrolyse et de synthèse, conduisant à une grande diversité de
molécules, acides, esters, amides…. Les domaines d’applications sont nombreux : les bio-énergies, les arômes,
bio-lubrifiants, bio-plastifiants, émulsifiants, produits phytosanitaires et détergents, cosmétiques, synthons pour
la chimie fine, produits pharmaceutiques… Aujourd’hui, grâce aux outils génétiques, il est possible de modifier
leur activité, spécificité et thermostabilité pour les adapter idéalement aux contraintes industrielles. Dans ce
travail de doctorat, nous nous sommes intéressés à quatre lipases d’intérêt industriel. Les 3 premières
appartiennent à la famille des lipases de Candida rugosa (Lip1, Lip3 et Lip4). Bien que très homologues, leurs
spécificités sont très différentes. Elles se distinguent de toutes les autres lipases par un site actif composé d’un
long tunnel avec la triade catalytique à l’entrée de celui-ci. Cela en fait une enzyme particulièrement intéressante
pour la conversion et la purification d’acides gras à longue chaîne. La quatrième est une nouvelle lipase
identifiée chez la levure oléagineuse, Yarrowia lipolytica. Elle est très active sur les acides gras à longue chaîne,
active à pH acide et présentant une grande énantiosélectivité sur des molécules d’intérêt pharmaceutique, les
esters d’acide 2- halogéno-aryl acide acétique.
Dans un premier temps, un nouveau système d’expression, une souche spécifique de Yarrowia lipolytica, a été
étudié pour l’expression de variants construits par mutagenèse dirigée. Cette souche JMY1212 permet une
intégration ciblée dans le génome de Y. lipoytica. Nous avons démontré qu’il s’agissait du premier système
d’expression permettant de comparer statistiquement l’activité de variants directement à partir du surnageant de
culture. Trois des lipases de Candida rugosa ont été clonées avec succès dans cette souche et leurs activités et
spécificités vis-à-vis de la longueur de chaines des acides gras ont été étudiées. Lip1 et Lip3 présentent une
spécificité pour les acides gras à longueur de chaine moyenne (C8-C10) alors que Lip4 préfère les C18:1. De,
plus, pour la première fois, la purification, à partir d’un mélange d’esters éthyliques issu d’huile de poissons,
d’acides gras poly-insaturés (PUFAs); acides cis-5, 8, 11, 14, 17-eicosapentaenoic (EPA) et cis-4, 7, 10, 13, 16,
19-docosahexaenoic (DHA), molécules bonnes pour la santé, a été réalisée avec les trois lipases séparées de C.
rugosa. Quelle que soit l’enzyme, le rendement de récupération du DHA est supérieur à 93 % (97, 100 et 93 %
pour Lip1, Lip3 et Lip4 respectivement. Une pureté maximale en DHA de ~60 % a été obtenue avec Lip3 et
Lip4, à partir d’un mélange initial d’esters éthyliques contenant 25% de DHA. Une différence remarquable entre
ces trois enzymes est que Lip4 est capable de mieux hydrolyser l’ester d’EPA (60% contre 14 et 16% pour Lip1
et Lip3). Lip4 est même capable d’hydrolyser le DHA (7% contre 3 et 0 % pour Lip1 et Lip3).
La deuxième partie de ce travail a été consacrée à l’amélioration de l’énantiosélectivité des deux enzymes
étudiées vis-à-vis de synthons d’intérêt dans l’industrie pharmaceutique, les esters de 2-bromo aryl acide
acétique. La construction raisonnée d’un double variant de la lipase Lip2 de Y. lipolytica, D97AV232F, a permis
d’obtenir une enzyme totalement énantiosélective (E >200). Celle-ci reconnaît l’énantiomère R alors que la
lipase sauvage avait une faible préférence pour l’énantiomère S (E=5). Par ailleurs, cette exceptionnelle
augmentation de l’énantiosélectivité s’accompagne d’une amélioration de l’activité de l’enzyme qui est ainsi
multipliée par 4,5. Sur ce même mélange d’énantiomères, les 3 lipases de C. rugosa se sont avérées
remarquables. Malgré leur grande homologie, leur spécificité est différente. Lip1 et Lip3 sont totalement S
spécifiques (E>200), alors que Lip4 est R spécifique (E=15). Le docking moléculaire des énantiomères S et R
dans le site actif des lipases Lip1 et Lip4 a permis de mieux comprendre ces différences de spécificité et de
proposer des cibles de mutagenèse dirigée. L’encombrement et la nature de l’acide aminé présent en position 296
sont cruciaux pour la discrimination de l’enzyme.
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MOTS CLES :
Lipase, Candida rugosa, Yarrowia lipolytica, évolution dirigée, système d’expression, mutagenèse, modélisation
moléculaire, résolution de mélanges racémiques, purification de DHA
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Soutenance prévue le 22 avril 2010, à l’Université de Chulalongkorn, Thaïlande
Ecole Doctorale : Sciences Ecologiques, Vétérinaires, Agronomiques et Bioingénieries (SEVAB)
Cette thèse a été préparée au Laboratoire d'Ingénierie des Systèmes Biologiques et des Procédés (UMR CNRS 5504, UMR INRA 792) de
l'INSA de Toulouse. Elle a été financée du Royal Golden Jubillee Ph.D. Programme, Thaïlande Recherches Fonds et Ambassade de la
France.
3 4Last name: PIAMTONGKAM First name: Rungtiwa
Title: Expression and evolution of lipases from Candida rugosa and Yarrowia lipolytica to modify their
activities and specificities.
Speciality: Ecological Sciences, Veterinary, Agronomics and Bioengineering
Field: Microbiology and Biocatalysts Industrial
Supervisors: Alain Marty and Warawut Chulalaksananukul
Year: 2010 Place: Chulalongkorn University N° ordre: 1030 Pages: 199
ABSTRACT: